ÍNDICE DE PRÁCTICAS EN INSTITUTO

PRÁCTICA 1: REALIZACIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO

 PRÁCTICA 2: OBSERVACIÓN DE MICROORGANISMOS VIVOS EN FRESCO

PRÁCTICA 3: OBSERVACIÓN DE MICROORGANISMOS VIVOS MEDIANTE TÉCNICA DE GOTA PENDIENTE

PRÁCTICA 4: CULTIVO DE BACTERIAS DE MUCOSA ORAL EN MEDIO LÍQUIDO

 PRÁTICA 5: TINCIÓN VITAL CON ROJO METILO

PRÁCTICA 6: TINCIÓN SIMPLE CON AZUL DE METILENO

PRÁTICA 7: SIEMBRA EN MEDIO SÓLIDO EN TUBO

PRÁCTICA 8: SIEMBRA EN PLACA POR AGOTAMIENTO CON ASA DE PLATINO

PRÁCTICA 9: SIEMBRA EN PLACA POR AGOTAMIENTO CON ASA ESTÉRIL

PRÁCTICA 10: TINCIÓN DE GRAM

 PRÁCTICA 11: TINCIÓN DE ZIEHL - NEELSEN

PRÁCTICA 12: TINCIÓN DE WIRTZ - CONKLIN

 PRÁCTICA 13: ESCALA DE MCFARLAND

 PRÁCTICA 14: ANTIBIOGRAMA EN MUELLER HINTON

 PRÁCTRICA 15: SIEMBRA POR AGOTEMIENTO EN COLUMBIA, LEVINE Y MCCONKEY

 PRÁCTICA 16: PRUEBA CATALASA

 PRÁCTICA 17: PRUEBA OXIDASA

PRÁCTICA 18: PRUEBA POTASA

 PRÁCTICA 19: SIEMBRA EN MEDIO KIA

 PRÁCTICA 20: PRUEBA COAGULASA

PRÁCTICA 21: IMVIC

 PRÁCTICA 22: MULTIPRUEBA

ESTUDIO DE BACTERIAS

TÉCNICA
MUESTRA 2
MUESTRA 9
GRAM
POSITIVA
POSITIVA
BAAR
NO BAAR
NO BAAR
ESPORAS
SI ESPORULAN
SI ESPORULAN
CATALASA
NEGATIVA
NEGATIVA
OXIDASA
NEGATIVA
POSITIVA
POTASA
NEGATIVA
NEGATIVA
COAGULASA
NEGATIVA
NEGATIVA
INDOL
NEGATIVA
NEGATIVA
ROJO METILO
NEGATIVA
NEGATIVA
VOGES-PROSKAUER
NEGATIVA
NEGATIVA
CITRATO
NEGATIVA
NEGATIVA
KIA (GAS)
NEGATIVA
NEGATIVA
KIA (FERMENTACIÓN)
NEGATIVA
NEGATIVA
KIA (H2S)
NEGATIVAPOSITIVA

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PRUEBA OXIDASA

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FUNDAMENTO: La prueba se realiza con unas tiras reactivas que tienen impregnado fenilendiamina, y en presencia de oxigeno, si la bacteria posee una enzima llamada citocromooxidasa. Esto se observa mediante un cambio a color azul, si este se produce, la prueba es positiva. OBJETIVO:  Esta prueba se realiza con el fin de poder clasificar al tipo de bacteria de una forma más, según si es oxidasa positiva o negativa, lo que nos puede ayudar a identificar especie y género de la bacteria. MATERIAL: Tiras reactivas con fenilendiamina Asa de siembra Bacterias 2 y 9 Mechero bunsen PROCEDIMIENTO: Esterilizamos el asa en el mechero bunsen, y cogemos una muestra de la bacteria, y la depositamos en la tira reactiva. Si se produce un cambio a color azul, la prueba es positiva, si no, negativa. RESULTADOS: La prueba de un resultado positivo para la bacteria numero 9 y negativo para la número 2.                                     9, oxidasa positivo                        2, oxidasa
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SIEMBRA EN PLACA POR AGOTAMIENTO CON ASA DE PLATINO

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FUNDAMENTO: Al introducir bacterias en un medio nutritivo e incubarlas a una temperatura determinada durante cierto tiempo, vamos a conseguir la proliferación de un cultivo de células, que van a aumentar su número exponencialmente. OBJETIVO: Conseguir un cultivo de bacterias en un medio sólido. MATERIAL: Cultivo celular número 2 y 9 Asa de siembra Mechero Bunsen Gradilla Placa con medio sólido PROCEDIMIENTO: Rotulamos la placa de Petri con la fecha y la siembra que vayamos a realizar. Encendemos el mechero y esterilizamos el asa de platino. Cogemos la placa en la que está uno de los cultivos, y clavamos el asa en cualquier sitio donde no haya crecimiento para enfriar el asa de siembra. Vamos a la zona con crecimiento y deslizamos el asa por encima para arrastras una muestra representativa del cultivo. Cerramos la placa y cogemos la placa que no está sembrada aún, la abrimos y desde arriba empezamos a depositar la muestra en zig-zag, sin llegar al centro de la placa, la c
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FUNDAMENTO En esta práctica realizaremos una siembra en cesped, en placa con Mueller Hinton, para colocar distintos antibióticos y conocer qué antibiótico es el idóneo para inactivar la población. OBJETIVO El objetivo final de la práctica es identificar el antibiótico que va a ser capaz de inhibir el crecimiento bacteriano. MATERIAL Medios Mueller Hinton Bacterias 2 y 9 SSF Tubos de ensayo Gradilla Asa de siembra Mechero bunsen Asa de Digralsky Vaso de precipitados Alcohol Pinzas Antibióticos (Colistín, amoxicilina + Ac. clavulánico, Amikacin, Azlocillin) Micropipeta de 100 microlitros Puntas de micropipeta COMPOSICIÓN MUELLER HINTON 1,5 g/l de Almidón 2 g/l de infusión de carne 17,5g/l de peptona de caseína hidrolizada 17g/l de agar pH: 7,4 PROCEDIMIENTO Echamos en un tubo de ensayo un poco de SSF. Cogemos el tubo con nuestra bacteria, esterilizamos el asa de platino, pasamos la boca del tubo por el mechero y cogemos un poco de muestra. Volvem
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