MICROBIOLOGÍA BLANCA ESPÍN

FUNDAMENTO: Al introducir bacterias de la mucosa oral en un medio nutritivo e incubarlas a una temperatura determinada durante cierto tiempo, vamos a conseguir la proliferación de un cultivo de células, que van a aumentar su número exponencialmente. OBJETIVO: Conseguir un cultivo de bacterias de la mucosa oral. MATERIAL: - Papel de filtro - Gradilla - Mechero Bunsen - Torundas con isopo - Medio de cultivo líquido - Mechero PROCEDIMIENTO: Primeramente, se enciende el mechero Bunsen.  Introducimos la torunda en la boca y la frotamos por todos los sitios posibles. Sacamos la torunda de la boca con una mano, con la otra cogemos un medio de cultivo, y un el meñique de la mano que sujeta la torunda quitamos el tapón. Introducimos el tubo con el medio a la llama para esterilizar. Metemos la torunda en el tubo y frotamos contra las paredes para que la muestra se desprenda. Partimos la parte sobrante de la torunda, volvemos a esterilizar la boca del tubo y ponemos e

FUNDAMENTO : Al realizar la observación en fresco, podemos comprobar los microorganismos aún vivos, ya que si usáramos métodos de tinción, los microorganismos estarían muertos. Estando vivos se pueden observar sus movimientos. OBJETIVO: Observar los microorganismos vivos y poder visualizar sus movimientos. MATERIAL: - Papel de filtro  - Muestras de aguas (charco y rí o Segura) - Gradilla - Tubos de ensayo - Pipetas pasteur - Agua destilada - Cubres - Portas con pocillos - Microscopio óptico PROCEDIMIENTO: Colocamos una gota pequeña de muestra de agua en el centro del cubre. Humedecemos, o bien los laterales del cubre con agua destilada o bien el porta con vaho. Colocamos el porta con el pocillo hacia abajo, justo encima de la gota del cubre. Se pegarán por el previo humedecimiento. Con la gota pendiente y sin tocar la superficie del pocillo, podemos observar al microscopio. RESULTADOS: En la visualización de la muestra de agua del río Segura, podemos

FUNDAMENTO : Al realizar la observación en fresco, podemos comprobar los microorganismos aún vivos, ya que si usáramos métodos de tinción, los microorganismos estarían muertos. Estando vivos se pueden observar sus movimientos. OBJETIVO: Observar los microorganismos vivos y poder visualizar sus movimientos. MATERIAL: - Papel de filtro  - Muestras de aguas (charco y rio Segura) - Gradilla - Tubos de ensayo - Pipetas pasteur - Agua destilada - Cubres - Portas - Microscopio óptico PROCEDIMIENTO: Colocamos una gota de una de las muestras en un porta, y la cubrimos con un cubre. La llevamos al microscopio para visualizar. RESULTADOS: En la visualización de la muestra de agua de charco en fresco, podemos distinguir algunos microorganismos, y podemos observar los movimientos que estos tienen por la muestra. Si lo comparamos con el método de gota pendiente, el movimiento es menor, ya que en la otra técnica, tienen más espacio y superficie por la que desplazarse.

FUNDAMENTO: Los medios de cultivo, que pueden ser tanto gelatinosos como líquidos, contienen los nutrientes que van a alimentar a los microorganismos que más tarde se cultiven en ellos, y pueden contener suero, sangre o vitaminas. OBJETIVOS: Preparar medios estériles para el posterior cultivo de microorganismos. MATERIAL: - Piseta - Probeta - Frasco de rosca - Embudo - Varilla - Agar nutritivo - Vidrio de reloj - Espátula - Balanza - Cremallera - Pipeta de cristal CÁLCULOS: 23gr - 1000ml       x = 6,9 gramos x       -  300ml PROCEDIMIENTOS: Para medios en placa de Petri: Pesamos la cantidad necesaria de agar en la balanza, con el vidrio de reloj y la espátula. Vertemos el agar en el frasco de rosca con ayuda del embudo y agua destilada, y enrasamos hasta la cantidad recomendada por el fabricante.  Calentamos la disolución en el microondas hasta que se vuelva transparente.  A continuación, lo metemos al autoclave para esterilizarlo